一、植物组织培养的应用简介(论文文献综述)
张文泉[1](2013)在《樟子松外生菌根真菌多样性及菌根生物技术研究》文中认为本研究包括樟子松外生菌根的形态学、组织学特征分析,外生菌根分子鉴定,外生菌根真菌对樟子松苗木生长的影响,樟子松组培苗菌根化等四部分内容,现分述摘要如下:(一)外生菌根形态学、组织学特征分析外生菌根中真菌组织形态学和解剖学特征的稳定性,为外生菌根的分类鉴定创造了条件和可能性,在进行外生菌根分类鉴定时,重点应放在真菌组织的特征上。本研究从樟子松为出发点,以菌根共生体为研究对象,系统地从形态学和解剖学的角度研究了与之共生的外生菌根类型,详细描述了19种外生菌根类型,并根据图鉴对所分出的外生菌根的颜色、外部形态、菌套表面结构及内部解剖结构等特征进行了归纳总结;探索了以宏观的形态、颜色和显微结构中菌套菌丝排列图式、菌套表面结构及菌丝和菌索内部结构等特征为主要依据进行外生菌根分类鉴定的可行性。(二)外生菌根根尖分子鉴定研究本研究在分出基本类型的基础上,以樟子松的菌根共生体的根尖为材料,提取DNA,利用真菌特有引物ITS1F和ITS4,在PCR基础上对外生菌根真菌rDNA的ITS区段进行碱基序列测定,然后与互联网上DNA序列数据库中的信息资源进行比较,确定其外生菌根真菌的多样性。本研究中共分出19个菌根类型,并鉴定科和属或者到种的水平,鉴定到科水平的有3个类型,鉴定到属的有1个类型,其余14个类型都鉴定到了种;其中属于担子菌亚门的有15株,子囊菌亚门的有4株。本研究在进行分子鉴定的同时,充分的利用了互联网上的生物信息资源,构建了分类报告,并对其进行了分析。(三)外生菌根真菌对樟子松苗木生长的影响本研究在室内条件下对樟子松幼苗与点柄乳牛肝菌、褐环乳牛肝菌、块菌、绒边乳菇、黄孢红菇、兰丝膜菌、彩色豆马勃和土生空团菌的菌根人工合成进行了比较全面的试验研究。通过观测苗木生长、根系和菌根的发育、生物量累积,研究了樟子松外生菌根的形成及对苗木生长效应的影响,并对樟子松优良菌根真菌的筛选进行尝试。试验结果表明:点柄乳牛肝菌与褐环乳牛肝菌与樟子松根系快速形成菌根,对樟子松幼苗的早期生长有明显的促进作用,是樟子松菌根化育苗首选的菌根真菌。接种该两种菌种的樟子松幼苗的平均苗高、地径、生物累积量均因菌根的形成而明显增加,生物累积量甚至可达到未接种苗的2~3倍。另外,对樟子松菌根化苗(合成130d)进行了自然干旱胁迫研究,目的是探讨菌根化樟子松苗木的抗旱机理。结果表明,菌根化苗木可以通过提高苗木光合速率、增加苗木根茎比,提高叶片SOD活性、Pro.含量、降低MDA在植物体内的积累等多种生理、生化代谢途经提高樟子松苗木的抗旱性,其中抗旱性最强的菌种为褐环乳牛肝菌,其菌根化苗较对照苗临界致死时间推迟61h。(四)组培苗菌根化本研究以樟子松成熟胚为外植体,研究了不同生长调节剂组合对樟子松愈伤组织诱导及分化的影响,并获得了完整的再生植株。建立了樟子松植株再生体系,确立了樟子松组织培养各阶段的最优条件:诱导愈伤组织的最佳培养基组合为1/2MS+1.5mg L-12,4-D+0.5mg L-16-BA;愈伤组织增殖的最佳培养基组合为1/2MS+1.0mg L-12,4-D+0.2mg L-16-BA;愈伤组织分化的最佳培养基组合为1/2MS+0.1mg L-1IBA+1.0mg L-16-BA;不定芽伸长生长的适宜培养基为1/2MS+0.1%活性炭,诱导生根的最佳培养基组合为1/4MS+0.5mg L-1NAA+0.2mg L-1IBA。对移栽后樟子松组培苗接种外生菌根真菌S.g和G-S.g,5个月以后,其菌根化率均达到了98%,其菌根侵染率均达到了75%以上,菌根化樟子松组培苗苗高、地茎、干重与对照相比均有显着性提高,组培苗菌根化,可以显着促进宿主苗木的生长,尤其是地下生物量的增加。
许智宏,张宪省,苏英华,胡玉欣,徐麟,王佳伟[2](2019)在《植物细胞全能性和再生》文中提出细胞全能性和多能性是植物再生的细胞学基础. 2005年, Science杂志公布了125个最具挑战性的科学问题,其中植物细胞全能性被列为最重要的25个科学问题之一.植物体细胞的命运如何在激素作用下进行重编程,通过细胞分裂和分化发育成为一个独立的植株或器官是建立植物高效再生方法的理论基础.植物再生技术的发展和基因组编辑技术的应用将引领作物分子育种技术的变革,培育出更多高产、多抗、环境友好的未来作物,助推世界农业的可持续发展.本文回顾了新中国成立70年以来我国在植物组织培养和细胞全能性领域的研究成果和发展历程,通过总结国内外最新的研究进展提出本领域亟需回答的重要科学问题以及学科将来的发展方向.
雷巾茗[3](2020)在《樱花组培快繁与扦插繁殖研究》文中认为樱花是着名的木本观赏植物,是蔷薇科(Rosaceae)李属(Prunus)樱亚属(Prunus Subgenus Cerasus)植物的泛称。国内外樱花品种资源非常丰富,樱亚属植物以其较高的观赏价值、经济价值和生态价值而越来越受到人们的青睐。随着观赏类樱花在园林中广泛应用,传统的嫁接和播种繁殖,远不能满足市场需求。‘御殿场’樱是具有良好观赏性状的红花品种,是研究组织培养和扦插繁殖的优良木本材料,对‘御殿场’樱的组培和扦插繁育方法的探究,对其他品种樱花快速繁殖培养提供了一定的参考,有利于工工厂化快速生产,对于樱亚属植物的繁殖具有很大的实际意义。本试验主要研究结果如下:1.利用带芽茎段进行组培扩繁:(1)适宜消毒灭菌的方法为75%酒精冲洗30s,2%的Na Cl O处理2min,污染率为46.7%,成活率达43%。(2)最佳诱导侧芽的培养基类型为:MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.2mg/L,此时侧芽诱导率达85%,平均诱导侧芽的个数为1.3个。(3)最适合侧芽增殖的培养基类型为:MS+6-BA3.0mg/L+2,4-D0.6mg/L+GA1.0mg/L,促进培养苗增高的最佳培养基为MS+6-BA2.0mg/L+2,4-D0.4mg/L+GA0.5mg/L。可与添加活性炭1.0g/L的抗褐化培养基交替使用,交替周期为一周,能够有效降低褐化率。(4)生根培养的最佳培养基为:MS+ABT8g/L+蔗糖60g/L,此时生根率为100%,平均生根数达17条,诱导出的根系粗壮。(5)最佳炼苗天数为5d,移栽到蛭石:草炭的体积比为1:1的基质中,可以使移栽成活率达到90%,移栽苗长势良好。2.愈伤组织再生试验探究:(1)消毒灭菌的最优方案为:先用浓度为75%的酒精浸泡30s,再用1%的NaCl O处理30s,能将污染率控制在15%左右,成活率为58%。(2)诱导愈伤组织时选用一年生枝条上部完全展开的叶片做外植体,最佳培养方式为接种于1/2MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.3mg/L+2,4-D1.5mg/L的培养基中,暗培养5d后转入光照条件下培养,诱导率最高,愈伤组织形态呈致密颗粒状,颜色为绿色,边缘为红色。(3)适合愈伤组织增殖的最佳培养基为:1/2MS+6-BA0.5mg/L NAA0.05mg/L+AC0.5g/L,21d后愈伤组织增殖倍数达3.5左右。抗褐化剂能显着降低愈伤组织的褐化率,增殖后的愈伤组织颜色为绿色,边缘为红色,质地为致密颗粒状。(4)诱导分化不定芽的最佳培养基类型为:1/2MS+6-BA1.0mg/L+IBA0.03mg/L+GA1.5mg/L+蔗糖60g/L,不定芽的分化率6.67%。3.用带芽茎段进行扦插扩繁:结果表明对‘御殿场’樱扦插生根的影响能力的大小依次为植物生长调节剂种类、扦插基质、植物生长调节剂浓度。最佳扦插方案为将插穗用400mg/L的ABT溶液浸泡30min之后扦插在蛭石中,扦插生根率最高,可达到75%以上,生根数量多且长度较长,根系分布均匀。
陈佳[4](2014)在《无患子组织培养再生体系研究》文中研究表明无患子(Sapindus mukurossi),又名肥皂树,是落叶乔木,主要靠种子播种繁殖,但其种皮坚硬,蛀虫率高,而且出苗不整齐,周期长,严重限制了无患子的自然更新和产业化应用。组织培养能够弥补种子繁殖的不足,减少对外界自然环境的依赖程度,不仅能保持母株优良特性不变,而且繁殖速度快,繁殖系数高,可降低生产成本,满足大规模种植无患子的需求,为开发无患子的科研价值奠定了深厚的基础。本文在系统地了解了无患子国内外植株研究现状及总结前人研究工作的基础上,以无患子的优良品种作为外植体材料,对无患子离体快繁体系中各阶段的主要影响因素和最佳培养基配方进行探讨研究,从而建立高效稳定的无患子组织培养技术体系,为无患子的规模化育苗提供一条有效途径,为无患子苗木的工厂化生产及应用奠定基础。本研究的主要成果如下:(1)通过外植体灭菌试验的结果可知,最好的消毒方法是先用75%酒精消毒10s,然后用0.1%HgCl2消毒8min,最后用2%NaClO消毒5min,此时的污染率最低,褐化率也最低,成活率最高。(2)愈伤组织诱导以MS+2,4-D2.0mg·L-1+IBA0.1mg·L-1为最佳培养基组合,诱导效果最好。当IBA浓度不变,2,4-D浓度升高,愈伤组织的诱导率也随着升高,平均启动时间也越快,诱导出的愈伤组织质量也越来越高;当2,4-D浓度不变时,高浓度的IBA对愈伤组织的诱导有明显的抑制作用,平均启动时间也越来越慢,愈伤组织会变成白色的疏松状,质量明显下降。(3)通过两种不同的外植体对比试验,可知新生顶芽的出芽率明显优于带腋芽的茎段。新生顶芽接入培养基后,生长较快,芽体粗壮嫩绿;带腋芽的茎段在接入培养基的初期,腋芽萌发速度较慢,芽体细长瘦弱,茎段切口处有大量的愈伤组织生成。(4)外植体直接诱导不定芽的最佳培养基为MS+NAA0.2mg·L-1+IBA0.05mg·L-1+6-BA3.0mg·L-1,萌芽率最高,达94.01%;通过极差和方差分析可知,各因素对无患子芽诱导影响的主次关系为:NAA>6-BA>IBA;NAA和6-BA对芽体启动培养的影响都达到了显着水平。(5)愈伤组织诱导芽的最佳培养基组合为MS+NAA0.05mg·L-1+6-BA2.5mg·L-1+KT0.5mg·L-1,愈伤组织分化出深绿色的芽体最多,且长势最好;根据极差R值所得,上述3个因子对愈伤组织诱导芽影响的主次关系为:NAA>6-BA>KT.且NAA对愈伤组织诱导芽有极显着性影响(P值=0.0074)。(6)在继代增殖培养中,9种不同激素配比的培养基增殖系数差异性极显着(p<0.01),其中处理5的增殖系数极显着的高于其他处理,达4.20,且没有愈伤组织形成,芽体最健壮,苗的长势也最好,因此处理5:IBA0.02mg·L-1+6-BA1.0mg·L-1为增殖培养中最优的激素配比组合。相同浓度的IBA,在不同浓度的6-BA作用下,其增殖系数出现先上升后下降的趋势,因此高浓度的6-BA对不定芽增殖培养有抑制作用。当6-BA浓度一定时,和高浓度的IBA组合,基部会出现少量的愈伤组织,由此可以判断,高浓度的IBA会促使不定芽在增殖培养中形成愈伤组织,抑制不定芽的发生。(7)通过壮苗培养试验可知,MS+NAA0.1mg·L-1+GA30.1mg·L-1处理下的组培苗长势最差,MS+NAA0.5mg·L-1+GA30.3mg·L-1处理下的组培苗生长最好,叶多浓绿,说明高浓度的NAA和GA3对组培苗的生长较好,苗较粗壮。(8)在探讨不同的植物生长调节剂对生根培养的影响试验中,1/2MS+IBA0.5mg·L-1+NAA0.1mg.L-1的生根率最高,为80.47%,是生根培养最适宜的培养基。IBA和NAA配合使用比单独使用IBA效果要好;但高浓度的IBA会抑制根的发生。(9)不同的生根促进剂对生根培养也有显着的影响,ABT1和GGR6对无患子的生根诱导上起到了极显着性影响,各浓度均可在不同程度诱导生根。其中处理I2:1/2MS+ABT12.0mg·L-1生根率最高,达77.67%,根最多,且生长最好。在1.0-4.0mg.L-1范围内,随着ABT1浓度的增加,无患子组培苗生根率呈现出先增加后降低的趋势;随着GGR6浓度的增加,生根率呈现出下降的趋势。由此可知,当生根促进剂浓度过高时,会抑制生根的效果。(10)从炼苗方案的试验结果可以看出,最佳的炼苗方式为闭瓶锻炼4d,开瓶锻炼3d,其平均成活率可达84.46%。而只经过开瓶锻炼或只经过闭瓶锻炼的试验组,其成活率均较低。由此可以得到以下几个结论:①炼苗过程对组培苗的移栽成活率有重要影响,经过炼苗处理的平均成活率显着高于不炼苗的组培苗;②炼苗时间的长短对试管苗移栽成活率有着极显着的影响;③闭瓶锻炼和开瓶锻炼两个过程均必不可少,缺少其中一个阶段都将降低移栽成活率。(11)在移栽时,不同的基质类型对无患子小苗的成活率有显着性影响,小苗的生长状况也有很大的差异。试验结果表明,泥炭土:珍珠岩:河沙=1:1:1的成活率极显着的高于其他基质类型,达到83.27%,小苗健壮,叶色深绿,生长最好。
王娟,李金鑫,李建丽,高文远[5](2017)在《植物组织培养技术在中药资源中的应用》文中认为植物组织培养技术以其独特的优势被广泛的应用于中药资源领域,在中药资源保护方面发挥了重要的作用。该文综述了近年来植物组织培养的一些应用,包括植物组织培养生产药用植物活性化合物、遗传多样性分析、道地药材、诱导子应用、生物合成及转基因植物等。通过以上研究将进一步促进植物组织培养技术的发展,使其在中药资源领域发挥更大的作用。
焦骄[6](2016)在《黄芪毛状根培养体系的优化及其主要活性成分生物合成的诱导调控研究》文中指出黄芪是黑龙江省极具发展和应用前景的大宗林下药用植物资源,通常以3-5年所采收的干燥根入药,由于多年的滥采滥挖,黑龙江省的野生黄芪资源已濒临灭绝,而黄芪栽培种的品质退化以及皂苷和异黄酮类有效成分含量易受环境变化和病虫害等影响,已造成它们质量下降和临床治疗效果不佳等不良后果。利用植物组织培养技术生产药用次生代谢活性成分并阐明其生物合成机制,现已成为现代林业生物制剂和森林植物次生代谢工程研究的重要内容。本研究优化并建立了一个高效快速的黄芪毛状根体外诱导体系,系统筛选出了高产皂苷和异黄酮类活性成分的毛状根株系,并通过PCR分析实现对其分子鉴定。同时利用相关数理统计实验设计和动力学模型,系统优化了黄芪毛状根的液体培养条件,并对其中皂苷和异黄酮次生代谢活性成分进行了LC-MS/MS定性和定量分析检测。通过外源理化和生物诱导子胁迫处理黄芪毛状根培养体系,利用LC-MS/MS技术分析诱导处理前后黄芪毛状根中皂苷和异黄酮类活性成分含量的变化规律,并结合qRT-PCR技术分析诱导处理前后黄芪毛状根中皂苷和异黄酮生物合成酶基因的表达差异性规律,最终初步阐明黄芪中皂苷和异黄酮类次生代谢活性成分生物合成路径中的关键调控酶基因。本论文的主要研究内容及结果如下:1、优化黄芪毛状根培养体系高效生产皂苷和异黄酮类次生代谢活性成分(1)选取3周龄黄芪无菌苗叶片作为外植体,经发根农杆菌LBA9402侵染后在含有100μM乙酰丁香酮浓度的MS培养基上共培养2天,然后转移到含500 mg/L头孢噻肟钠浓度的抑菌培养基中培养,最终能够达到66.84%的毛状根诱导率,而且整个诱导周期只需13天。以毛状根生长量和次生代谢活性成分积累量为考察指标,筛选得到高产皂苷的毛状根株系AMHRL Ⅵ和高产异黄酮的毛状根株系AMHRL Ⅱ,并进行了PCR分子鉴定。(2)利用CCD实验设计和Slogistic动力学模型对高产皂苷的黄芪毛状根株系AMHRLVⅥ液体培养条件进行了系统的优化,得到最佳液体培养条件如下:培养温度27.8℃,接种量1.54%,蔗糖浓度3.24%和培养时间36天。利用BBD实验设计对高产异黄酮的黄芪毛状根株系AMHRL Ⅱ液体培养条件进行了系统的优化,得到最佳液体培养条件如下:培养温度27.8℃,接种量1.44%,蔗糖浓度3.39%和培养时间34天。利用LC-MS/MS对黄芪毛状根中的6种皂苷类单体成分和5种异黄酮类单体成分进行了定性和定量分析。在最佳培养条件下,黄芪毛状根培养体系中总皂苷(2.657±0.088 mg/g DW)和总异黄酮(234.77土4.27μg/g DW)产率,明显高于3年生栽培黄芪中的总皂苷(2.435±0.093 mg/g DW)和总异黄酮产率(187.38土7.25 gg/g DW)。2、植物信号分子对黄芪毛状根培养体系中皂苷和异黄酮生物合成的诱导调控(1)利用茉莉酸甲酯(MJ)、乙酰水杨酸(ASA)和水杨酸(SA)信号分子对黄芪毛状根中皂苷和异黄酮类次生代谢活性成分的生物合成进行了诱导调控。诱导实验策略结果表明MJ对生长处于平台期的黄芪毛状根(34日龄)中次生代谢活性成分的生物合成诱导效果最佳。利用CCD实验设计优化并确定了最佳MJ诱导条件。MJ诱导增强34日龄黄芪毛状根培养体系Ⅵ生产皂苷的最佳条件为:MJ浓度157.4μM和诱导时间18.4 h。在此条件下总皂苷得率为5.547±0.133 mg/g DW,是未处理空白对照组中总皂苷得率(2.685±0.051mg/gDW)的2.07倍。MJ诱导增强34日龄黄芪毛状根培养体系Ⅱ生产异黄酮的最佳条件为:MJ浓度283 μM和诱导时间33.75 h。在此条件下总异黄酮得率为2250.10±71.88μg/gDW,是未处理空白对照组中总异黄酮得率(231.64±6.51μg/g DW)的9.71倍。(2)通过qRT-PCR分析皂苷和异黄酮生物合成路径中19个酶基因的转录表达水平,并结合LC-MS/MS分析皂苷和异黄酮类活性成分含量的变化规律,初步阐明了MJ诱导调控皂苷和异黄酮生物合成路径中的关键酶基因。实验结果表明MVD、IDI、FPS和SS是MJ诱导调控黄芪皂苷生物合成路径中的关键酶基因;CHI和IFS是MJ诱导调控黄芪异黄酮生物合成路径中的关键酶基因。此外,MJ诱导后黄芪毛状根培养体系中抗氧化酶的活力以及提取物的抗氧化活性显着增强,确定了黄芪毛状根对MJ诱导表现出了显着的氧化应激防御响应。3、UV辐射对黄芪毛状根培养体系中皂苷和异黄酮生物合成的诱导调控(1)利用UV-A、UV-B和UV-C对黄芪毛状根中皂苷和异黄酮类次生代谢活性成分的生物合成进行了诱导调控,实验结果表明UV-B对这两种次生代谢活性成分的生物合成诱导调控效果最好。UV-B诱导32日龄黄芪毛状根培养体系Ⅵ生产皂苷的最佳辐射剂量为54 kJ/m2,在此条件下总皂苷得率为3.431±0.092 mg/g DW,是未处理空白对照组中总皂苷得率(2.645±0.073 mg/g DW)的1.30倍。UV-B诱导增强34日龄黄芪毛状根培养体系Ⅱ中异黄酮积累的最佳辐射剂量为86.4 kJ/m2,此条件下总异黄酮得率为533.54±13.61μg/g DW,是未处理空白对照组中总异黄酮得率(232.93±3.08μg/g DW)的2.29倍。(2)利用qRT-PCR分析了黄芪皂苷和异黄酮生物合成路径中19个酶基因的转录表达水平,并结合LC-MS/MS分析皂苷和异黄酮类活性成分含量的变化规律,初步阐明了UV-B诱导调控黄芪皂苷和异黄酮生物合成路径中的关键酶基因。实验结果表明HMGR是UV-B诱导调控黄芪皂苷生物合成路径中唯一的关键酶基因;PAL和C4H是UV-B诱导调控黄芪异黄酮生物合成路径中的两个关键酶基因。此外,UV-B诱导后黄芪毛状根培养体系中抗氧化酶的活力以及提取物的抗氧化活性显着增强,确定了黄芪毛状根对UV-B诱导表现出了显着的氧化应激防御响应。4、真菌生物转化和生物诱导双重作用促进黄芪毛状根培养体系中黄芪甲苷的富集(1)基于课题组首次分离出来的一株可产脱乙酰化酶的灰变青霉属真菌Penicillium canescens,本研究构建了海藻酸钙固定化的P. canescens孢子小球(IPC)和黄芪毛状根共培养体系,一方面利用IPC所具有的脱乙酰化作用将一些低活性的黄芪甲苷前体衍生物(黄芪皂苷Ⅰ、黄芪皂苷Ⅱ和异黄芪皂苷Ⅱ)转化为高活性的黄芪甲苷,另一方面利用其生物诱导效应进一步增强黄芪毛状根中黄芪甲苷和异黄酮类活性成分的合成与积累。(2)IPC在黄芪毛状根培养体系Ⅵ中脱乙酰生物转化的最佳条件为:固定化孢子量为105个/瓶、共培养温度30℃、pH 7.0和共培养时间60 h。在此条件下,黄芪皂苷Ⅰ、黄芪皂苷Ⅱ和异黄芪皂苷Ⅱ几乎能够完全转化为黄芪甲苷。同时,IPC还能够显着诱导大部分皂苷生物合成酶基因(AACT、HMGS、HMGR、MK、FPS、SS、SE和CAS)转录表达水平上调。在IPC脱乙酰化生物转化及其生物诱导双重作用之下,黄芪甲苷得率(2.816±0.052 mgg/g DW)相对于未处理空白对照组(0.193±0.007 mg/gDW)增加了14.59倍。此外,IPC处理的黄芪毛状根中总异黄酮得率为673.21土10.75μg/g DW,是未处理空白对照组中总异黄酮得率(236.97±3.50μg/g DW)的2.84倍。IPC同样能够显着诱导异黄酮生物合成酶基因(PAL、C4H、4CL、CHS、CHR、CHI、IFS和13’H)转录表达水平上调。IPC还具有优异的稳定性,能够在60天贮存周期内保持其脱乙酰化活性和生物诱导效果稳定。此外,IPC在重复使用6次之后仍能保持良好的脱乙酰化活性和生物诱导效果,为后续利用该技术手段工业化生产黄芪甲苷奠定了坚实的基础。皂苷和异黄酮类化合物不仅仅是植物次生代谢活性成分,还可以作为植保素用以提高植物的抗逆性,确定它们生物合成路径中的关键酶,为未来利用分子育种来改良和培育新的抗性药用植物品种,或利用植物次生代谢工程技术手段高效生产药用活性成分,都具有重要的意义!
郝梓博[7](2019)在《利用组织培养技术对沂水百合快速繁殖的研究》文中研究指明百合(Lilium.spp)是百合科、百合属多年生花卉植物,具有很高的观赏价值和食用、药用价值,它的鳞茎可以用来治疗肺病、贫血等多种疾病,是多种补药的主要成分。现代的百合主要以种植为主,但是百合由于生长周期过长,并且很依赖自然条件和外界因素的限制。由于近几年,大量农民为了脱贫致富都种植百合,由于农民知识的缺乏,技术的制约,严重的阻碍了整个白合产业的发展,不利于百合种质资源的保存。本试验采自山东省的沂水百合作为实验材料,选取长势良好的百合嫩茎做为外植体,通过组织培养技术为百合建立高效的再生体系。本试验通过研究6-BA和NAA不同浓度组合对百合初代培养的影响、不同种类和浓度的生长素和细胞分裂素对百合继代培养的影响和不同培养基、不同生长素和浓度对百合生根培养的研究。最终建立了百合高效再生体系。其研究结果如下:1.初代培养沂水百合初代培养最适宜的培养基为MS+1.0mg/L6-BA+0.1mg/LNAA,增值系数为6.90,不定芽个数为207。2.继代培养沂水百合继代培养最适宜的细胞分裂素为CPPU,当CPPU浓度为1.0mg/L时,增值系数为8.40,不定芽个数为252。沂水百合继代培养最适宜的培养基为MS+0.1mg/LCPPU+0.05mg/LNAA。3.生根培养最适合沂水百合生根培养的生长素种类是NAA,最适合的浓度为0.1mg/L,最适合百合生根培养的培养基是1/2MS+0.1mg/LNAA,生根率达到了 96.67%,平均生根条数为8.7。
黄烈健,王鸿[8](2016)在《林木植物组织培养及存在问题的研究进展》文中研究表明从外植体选择及分化途径、影响增殖、生根的主要因素三方面,概述了近年来林木植物组培的研究进展,外植体3种分化途径(腋芽萌发途径、间接器官发生途径、体细胞发生途径)有其相应的最适外植体类型,林木组培首选腋芽萌发途径。培养基和植物生长调节剂是影响增殖的两大因素,对培养基的探索已从对林木植物组培常用培养基的筛选发展到无糖培养基的探索,出现了光自养、开放组培等概念;植物生长调节剂是生根的关键因素,外源激素与内源激素的相互作用对增殖有较大影响。阐述了组培中褐化、玻璃化、污染三大难题的起因和解决措施,对褐化和玻璃化的研究主要集中在外植体的生理状态和培养环境方面,提出无糖组培通过对培养环境进行改善,有望改善褐化、玻璃化问题;传统组培希望从无菌技术层面解决污染难题,这也造成了组培成本偏高的问题,进而对开放组培和无糖组培的探索,通过抑菌剂的添加及糖的剔除有望降低组培对无菌操作的要求。随着组培技术的发展,在抑菌剂加入的条件下,不进行高温高压灭菌,进行开放式的组培;利用植物自生的光合能力,剔除培养基中的蔗糖,同时改变光照条件、培养环境中的CO2浓度、湿度,以促进外植体光自养微繁殖生长;二者均着眼于降低组培成本,简化组培程序,有望使组培技术得到革新。本文对林木组织培养研究进展进行综述,为今后开展林木植物组织培养技术的研究提供重要参考。
戴莹,杨世海,赵鸿峥,赵连华[9](2016)在《药用植物组织培养中褐化现象的研究进展》文中认为药用植物外植体组织培养阶段,易受到各种因素的影响而产生褐化现象,这不仅影响药用植物外植体的鲜活度,而且还干扰了愈伤组织的诱导和再生,严重阻碍了药用有效成分的快速积累和组培技术的成功率。因此,研发快速、有效、安全、经济的褐化抑制方法显得尤为重要。对药用植物褐化现象、褐化机制、褐化影响因素及防褐有效措施进行了综述,以期为药用植物组织培养研究中抑褐措施提供科学参考,并对药用植物组织培养防褐技术进行展望。
吉训志,秦晓威,胡丽松,王晓阳,李付鹏,郝朝运[10](2019)在《木本植物组织培养》文中研究表明从影响植物组织培养的再生方式、关键因素与突出问题3个方面对木本植物组织培养技术发展进行了综述,以期为后续的木本植物离体再生研究提供参考。
二、植物组织培养的应用简介(论文开题报告)
(1)论文研究背景及目的
此处内容要求:
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景,再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题,并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例:
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
(2)本文研究方法
调查法:该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法:用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法:通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法:通过调查文献来获得资料,从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法:依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法:对研究对象进行“质”的方面的研究,这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法:通过具体的数字,使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法:运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法:这是社会科学用来分析社会现象的一种方法,从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法:通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、植物组织培养的应用简介(论文提纲范文)
(1)樟子松外生菌根真菌多样性及菌根生物技术研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
缩略语表 |
1 引言 |
1.1 菌根简介 |
1.2 外生菌根概况 |
1.2.1 外生菌根的形成及其真菌种类 |
1.2.2 林木外生菌根真菌多样性研究 |
1.3 外生菌根真菌分类学研究 |
1.3.1 外生菌根真菌形态学研究 |
1.3.2 外生菌根真菌分子生物学研究 |
1.4 外生菌根真菌对林木生长影响及生理生态研究 |
1.5 外生菌根合成与抗旱机理研究进展 |
1.5.1 影响外生菌根形成的因素 |
1.5.2 外生菌根形成机制 |
1.5.3 外生菌根抗旱机理研究进展 |
1.6 外生菌根生物技术及应用现状 |
1.6.1 菌根真菌的采集和分离 |
1.6.2 优良外生菌根真菌的筛选 |
1.6.3 菌剂及接种技术 |
1.6.4 应用技术 |
1.6.5 研究现状 |
1.6.6 存在的问题 |
1.7 植物组培苗菌根化研究 |
1.7.1 植物组织培养概述 |
1.7.2 植物菌根化技术研究 |
1.8 樟子松概述 |
1.8.1 自然分布 |
1.8.2 引种造林 |
1.8.3 生物学特性 |
1.9 研究背景及研究思路 |
1.9.1 研究背景 |
1.9.2 主要研究内容 |
1.9.3 采样地基本概况及技术路线 |
2 樟子松外生菌根形态分类鉴定 |
2.1 材料与方法 |
2.1.1 试验材料 |
2.1.2 试验试剂与仪器 |
2.1.3 试验方法 |
2.2 结果与分析 |
2.2.1 樟子松外生菌根形态解剖特征分析 |
2.3 小结与讨论 |
3 樟子松外生菌根真菌分子鉴定 |
3.1 材料与方法 |
3.1.1 试验材料 |
3.1.2 试验方法 |
3.2 结果与分析 |
3.2.1 外生菌根真菌基因组 DNA 的提取 |
3.2.2 rDNA ITS 区段的 PCR 扩增 |
3.2.3 rDNA ITS 区段测序的结果与分析 |
3.3 小结与讨论 |
4 试验室条件下樟子松菌根合成及外生菌根真菌对樟子松实生苗生长的影响 |
4.1 材料与方法 |
4.1.1 供试材料 |
4.1.2 试验方法 |
4.2 结果与分析 |
4.2.1 不同菌种的不同菌剂对樟子松实生苗菌根感染率的影响 |
4.2.2 不同菌种与樟子松实生苗形成的菌根形态 |
4.2.3 不同处理对樟子松实生苗生长量及生物量的影响 |
4.2.4 不同处理对樟子松实生苗叶绿素含量的影响 |
4.2.5 不同处理对樟子松实生苗净光合速率的影响 |
4.3 小结与讨论 |
5 樟子松外生菌根化苗抗旱机理 |
5.1 材料与方法 |
5.1.1 供试材料 |
5.1.2 试验方法 |
5.2 结果与分析 |
5.2.1 不同处理对樟子松实生苗菌根侵染率的影响 |
5.2.2 不同处理对樟子松实生苗总生物量及根茎比的影响 |
5.2.3 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗叶绿素含量的影响 |
5.2.4 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗细胞膜透性的影响 |
5.2.5 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗叶超氧化物歧化酶活力的影响 |
5.2.6 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗叶片丙二醛含量的影响 |
5.2.7 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗叶片脯氨酸含量含量的影响 |
5.2.8 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗净光合速率的影响 |
5.2.9 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗叶水势的影响 |
5.2.10 干旱胁迫下不同处理对樟子松实生苗萎蔫及临界致死时间的影响 |
5.3 小结与讨论 |
6 樟子松组织培养及植株再生 |
6.1 材料与方法 |
6.1.1 供试外植体 |
6.1.2 试验方法 |
6.2 结果与分析 |
6.2.1 不同激素处理对愈伤组织诱导的影响 |
6.2.2 不同激素处理对愈伤组织增殖的影响 |
6.2.3 不同激素处理对不定芽分化的影响 |
6.2.4 不同处理对不定芽伸长生长的影响 |
6.2.5 不同处理对不定根诱导的影响 |
6.3 小结与讨论 |
7 樟子松组培苗菌根化 |
7.1 材料与方法 |
7.1.1 试验材料 |
7.1.2 试验方法 |
7.2 结果与分析 |
7.2.1 接种牛肝菌对樟子松组培苗生长的影响 |
7.3 结论与讨论 |
8 结论与展望 |
8.1 研究特色与创新之处 |
8.2 主要结论 |
8.3 问题与展望 |
致谢 |
参考文献 |
附录 |
作者简介 |
(2)植物细胞全能性和再生(论文提纲范文)
1 植物细胞全能性的发现 |
2 植物细胞全能性的基本概念 |
3 我国在植物组织培养和细胞全能性领域的历史贡献 |
4 改革开放后我国植物组织和细胞培养领域的发展历程 |
5 植物再生现象的机制和应用 |
5.1 嫁接与组织修复 |
5.2 扦插与根从头再生 |
5.3 植物愈伤组织形成和芽从头再生的分子调控 |
5.4 体细胞胚胎发生 |
6 学科发展的方向与展望 |
(3)樱花组培快繁与扦插繁殖研究(论文提纲范文)
摘要 |
abstract |
主要符号对照表 |
1.引言 |
1.1 樱花概况 |
1.1.1 樱花的种质资源研究现状 |
1.1.2 樱花及其园林应用价值 |
1.2 樱亚属植物繁殖技术研究进展 |
1.2.1 樱亚属植物种子繁殖研究进展 |
1.2.2 樱亚属植物嫁接繁殖研究进展 |
1.2.3 樱亚属植物扦插繁殖研究进展 |
1.2.4 樱亚属植物组织培养繁殖研究进展 |
1.2.5 樱花组织培养的影响因素 |
1.2.6 樱花组织培养中面临的问题 |
1.3 樱亚属植物的应用价值及目前存在的问题 |
1.3.1 应用价值 |
1.3.2 目前存在的问题 |
1.4 ‘御殿场’樱的生物学特性及开发价值 |
1.5 本研究的目的意义 |
1.6 本研究的主要内容 |
1.6.1 利用带芽茎段扩繁试验研究 |
1.6.2 愈伤组织再生试验研究 |
1.6.3 ‘御殿场’樱扦插繁育技术研究 |
1.7 本研究的技术路线 |
2.带芽茎段扩繁试验研究 |
2.1 试验材料选择 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 无菌试材的准备及灭菌方案的探究 |
2.2.2 带芽茎段侧芽诱导试验 |
2.2.3 带芽茎段继代培养试验 |
2.2.4 组培苗生根培养试验 |
2.2.5 组培苗炼苗移栽试验 |
2.2.6 培养条件及统计方法 |
2.3 结果与分析 |
2.3.1 灭菌方法对外植体灭菌效果的影响 |
2.3.2 带芽茎段侧芽诱导试验 |
2.3.3 带芽茎段继代培养试验 |
2.3.4 组培苗生根培养试验 |
2.3.5 组培苗炼苗移栽试验 |
2.4 讨论与小结 |
2.4.1 影响侧芽诱导的因素 |
2.4.2 培养过程中试管苗出现褐化的原因及解决方法 |
2.4.3 影响试管苗生根和移栽情况的因素 |
2.4.4 小结 |
3 愈伤组织再生试验研究 |
3.1 试验材料 |
3.2 试验方法 |
3.2.1 无菌试材的准备及灭菌方案的探究 |
3.2.2 愈伤组织诱导试验 |
3.2.3 愈伤组织增殖培养 |
3.2.4 愈伤组织诱导分化不定芽试验 |
3.2.5 培养条件及统计方法 |
3.3 结果分析 |
3.3.1 灭菌方法对外植体污染率的影响 |
3.3.2 愈伤组织诱导试验 |
3.3.3 愈伤组织增殖培养 |
3.3.4 愈伤组织诱导分化不定芽试验 |
3.4 讨论与小结 |
3.4.1 培养过程中叶片出现玻璃化的原因及解决方法 |
3.4.2 不同培养条件下‘御殿场’樱诱导愈伤组织的形态 |
3.4.3 ‘御殿场’樱愈伤组织分化不定芽 |
3.4.4 小结 |
4 ‘御殿场’樱扦插繁育技术研究 |
4.1 试验材料 |
4.2 试验方法 |
4.2.1 插穗的采集与制作 |
4.2.2 试验设计 |
4.2.3 扦插与管理 |
4.2.4 测定指标与数据处理方法 |
4.3 结果分析 |
4.3.1 不同扦插基质诱导生根 |
4.3.2 不同生长调节剂种类诱导生根 |
4.3.3 生长调节剂浓度诱导生根 |
4.3.4 生根效果综合分析 |
4.3.5 樱花嫩枝扦插生根最佳组合的筛选 |
4.4 讨论与小结 |
5.总结与展望 |
参考文献 |
个人简介 |
导师简介 |
致谢 |
(4)无患子组织培养再生体系研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
1 前言 |
1.1 无患子的简介 |
1.1.1 无患子的起源与分布 |
1.1.2 无患子的形态特征与生活习性 |
1.1.3 无患子的繁殖方法 |
1.1.4 无患子的价值及应用前景 |
1.2 无患子组织培养的相关研究进展 |
1.2.1 植物组织培养概述 |
1.2.2 木本园林植物组织培养研究进展 |
1.2.3 无患子组织培养的研究进展 |
1.3 无患子应用于园林的研究进展 |
1.4 本研究的目的及意义 |
1.5 本研究的内容和技术路线 |
2 材料与方法 |
2.1 试验材料 |
2.1.1 外植体材料 |
2.1.2 试验仪器设备及药品 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 培养基的配制 |
2.2.2 灭菌程序与方法 |
2.2.3 接种方法 |
2.2.4 培养条件 |
3 试验设计 |
3.1 预备试验 |
3.2 外植体消毒试验 |
3.3 初代培养 |
3.3.1 愈伤组织诱导试验设计 |
3.3.2 不定芽诱导试验设计 |
3.4 愈伤组织诱导芽培养 |
3.5 不定芽增殖培养 |
3.6 壮苗培养 |
3.7 生根培养 |
3.7.1 不同的植物生长调节剂对生根培养的影响试验设计 |
3.7.2 不同浓度的生根促进剂对生根的影响试验设计 |
3.8 炼苗移栽 |
3.8.1 炼苗 |
3.8.2 移栽 |
3.9 数据收集及处理方法 |
3.9.1 数据的收集 |
3.9.2 数据的处理 |
4 结果与分析 |
4.1 预备试验 |
4.2 外植体灭菌试验 |
4.3 初代培养 |
4.3.1 愈伤组织诱导效果 |
4.3.2 不定芽诱导试验效果 |
4.4 愈伤组织诱导芽试验结果 |
4.5 继代增殖培养 |
4.6 壮苗培养 |
4.7 生根培养 |
4.8 炼苗移栽 |
4.8.1 不同炼苗方式对组培苗成活率的影响 |
4.8.2 不同基质对移栽苗成活率的影响 |
5 结论与讨论 |
5.1 结论 |
5.1.1 外植体消毒 |
5.1.2 启动培养 |
5.1.3 愈伤组织诱导不定芽培养 |
5.1.4 继代增殖培养 |
5.1.5 壮苗培养 |
5.1.6 生根培养 |
5.1.7 炼苗移栽 |
5.2 讨论 |
5.2.1 外植体消毒 |
5.2.2 启动培养 |
5.2.3 愈伤组织芽诱导培养 |
5.2.4 继代增殖培养 |
5.2.5 壮苗培养 |
5.2.6 生根培养 |
5.2.7 炼苗移栽 |
6 展望 |
参考文献 |
附录1:缩略词及专业名词 |
附录2:硕士期间发表的论文 |
附录3:试验图片展示 |
致谢 |
(5)植物组织培养技术在中药资源中的应用(论文提纲范文)
1 植物组织培养生产药用植物活性化合物 |
2 遗传多样性分析 |
3 道地药材 |
4 诱导子作用机制及其应用 |
4.1 诱导子的作用机制 |
4.1.1 细胞内信号分子和作用机制 |
4.1.2 转录因子 |
4.1.3 抗性基因的表达 |
4.2 诱导子在组织培养中的应用 |
4.2.1 诱导子的定义与分类 |
4.2.2 生物诱导子在植物组织培养中的应用 |
4.2.3 非生物诱导子在植物组织培养中的应用 |
5 生物合成生产药用植物活性成分 |
(6)黄芪毛状根培养体系的优化及其主要活性成分生物合成的诱导调控研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
1 绪论 |
1.1 黄芪研究进展 |
1.1.1 膜荚黄芪简介 |
1.1.2 黄芪的主要活性成分 |
1.1.3 黄芪的主要药理活性 |
1.2 植物毛状根培养技术研究进展 |
1.2.1 毛状根的体外诱导机制及特点 |
1.2.2 毛状根培养体系在生产植物次生代谢活性成分方面的应用 |
1.2.3 状根培养体系在阐明植物次生代谢产物生物合成路径方面的应用 |
1.2.4 毛状根培养体系在其他发面有潜力的应用 |
1.3 三萜皂苷类化合物生物合成路径 |
1.4 黄酮类化合物生物合成路径 |
1.5 诱导子对植物次生代谢产物生物合成的调控研究进展 |
1.5.1 诱导子的定义和分类 |
1.5.2 诱导子的调控作用特点 |
1.5.3 诱导子的调控作用机制 |
1.5.4 诱导子对植物毛状根中次生代谢产物生物合成的调控 |
1.6 黄芪毛状根培养体系研究进展 |
1.7 研究的目的意义 |
1.8 技术路线 |
2 优化黄芪毛状根培养体系高效生产皂苷和异黄酮类次生代谢活性成分 |
2.1 实验仪器、材料与试剂 |
2.2 实验方法与步骤 |
2.2.1 培养基的配制 |
2.2.2 黄芪无菌苗的培养 |
2.2.3 黄芪毛状根的诱导发生 |
2.2.4 高产皂苷和异黄酮的黄芪毛状根株系的筛选 |
2.2.5 黄芪毛状根株系的分子鉴定 |
2.2.6 高产皂苷的黄芪毛状根株系培养条件的优化 |
2.2.7 高产异黄酮的黄芪毛状株系根培养条件的优化 |
2.2.8 样品溶液的制备 |
2.2.9 LC-MS/MS分析检测 |
2.2.10 黄芪毛状根粗提物的抗氧化活性测定 |
2.2.11 数理统计分析 |
2.3 结果与讨论 |
2.3.1 黄芪毛状根诱导条件的优化 |
2.3.2 高产皂苷和异黄酮的黄芪毛状根株系的筛选 |
2.3.3 黄芪毛状根的PCR分子验证 |
2.3.4 高产皂苷的黄芪毛状根株系培养条件的优化 |
2.3.5 高产异黄酮的黄芪毛状根株系培养条件的优化 |
2.3.6 黄芪毛状根中皂苷和异黄酮的LC-MS/MS分析检测 |
2.3.7 黄芪毛状根粗提物的抗氧化活性 |
2.3.8 黄芪毛状根培养体系的优势 |
2.4 本章小结 |
3 茉莉酸甲酯、水杨酸和乙酰水杨酸对黄芪毛状根培养体系中皂苷和异黄酮生物合成的诱导调控 |
3.1 实验仪器、材料与试剂 |
3.2 实验方法与步骤 |
3.2.1 黄芪毛状根的培养 |
3.2.2 诱导子的制备 |
3.2.3 黄芪毛状根的诱导处理过程 |
3.2.4 黄芪毛状根总RNA提取和cDNA制备 |
3.2.5 qRT-PCR分析 |
3.2.6 样品溶液的制备 |
3.2.7 LC-MS/MS分析检测 |
3.2.8 黄芪毛状根中抗氧化酶活性测定 |
3.2.9 黄芪毛状根粗提物的抗氧化活性 |
3.2.10 数理统计分析 |
3.3 结果与讨论 |
3.3.1 选择合适的外源植物信号分子诱导策略 |
3.3.2 不同诱导子对黄芪毛状根中皂苷和异黄酮生物合成的影响 |
3.3.3 MJ对黄芪毛状根中皂苷和异黄酮生物合成诱导条件的优化 |
3.3.4 MJ对黄芪毛状根中不同皂苷和异黄酮单体成分的诱导效果 |
3.3.5 MJ诱导对皂苷生物合成酶基因的转录表达调控 |
3.3.6 MJ诱导对异黄酮生物合成酶基因的转录表达调控 |
3.3.7 黄芪毛状根对MJ诱导的氧化应激防御响应 |
3.4 本章小结 |
4 UV-A、UV-B和UV-C对黄芪毛状根培养体系中皂苷和异黄酮生物合成的诱导调控 |
4.1 实验仪器、材料与试剂 |
4.2 实验方法与步骤 |
4.2.1 黄芪毛状根的培养 |
4.2.2 黄芪毛状根的UV辐射处理过程 |
4.2.3 黄芪毛状根总RNA提取和cDNA制备 |
4.2.4 qRT-PCR分析 |
4.2.5 样品溶液的制备 |
4.2.6 LC-MS/MS分析检测 |
4.2.7 黄芪毛状根中抗氧化酶活性测定 |
4.2.8 黄芪毛状根粗提物的抗氧化活性 |
4.2.9 数理统计分析 |
4.3 结果与讨论 |
4.3.1 UV辐射对不同日龄的黄芪毛状根中皂苷和异黄酮生物合成的影响 |
4.3.2 UV辐射剂量对黄芪毛状根中皂苷和异黄酮生物合成的影响 |
4.3.3 UV-B对黄芪毛状根中不同皂苷和异黄酮单体成分的诱导效果 |
4.3.4 UV-B对皂苷生物合成酶基因的转录表达调控 |
4.3.5 UV-B对异黄酮生物合成酶基因的转录表达调控 |
4.3.6 黄芪毛状根对UV-B诱导的氧化应激响应 |
4.4 本章小结 |
5 固定化Penicillium canescens孢子脱乙酰生物转化和生物诱导双重作用促进黄芪毛状根培养体系中黄芪甲苷的富集 |
5.1 实验仪器、材料与试剂 |
5.2 实验方法与步骤 |
5.2.1 黄芪毛状根的培养 |
5.2.2 真菌P.canescens的来源 |
5.2.3 IPC的制备 |
5.2.4 IPC和黄芪毛状根的共培养 |
5.2.5 黄芪毛状根总RNA提取和cDNA制备 |
5.2.6 qRT-PCR分析 |
5.2.7 样品溶液的制备 |
5.2.8 LC-MS/MS分析检测 |
5.2.9 数理统计分析 |
5.3 结果与讨论 |
5.3.1 IPC在黄芪毛状根培养体系中生物转化应用的可行性 |
5.3.2 固定化孢子量、共培养温度和pH对IPC生物转化效果的影响 |
5.3.3 IPC生物转化过程中不同皂苷单体成分含量变化的动力学研究 |
5.3.4 IPC处理对黄芪毛状根中黄芪甲苷的富集效果 |
5.3.5 IPC处理对皂苷生物合成酶基因的转录表达调控 |
5.3.6 IPC处理对黄芪毛状根中异黄酮生物合成的影响 |
5.3.7 IPC的稳定性和重复使用性 |
5.4 本章小结 |
结论 |
参考文献 |
攻读学位期间发表的学术论文 |
致谢 |
附件 |
(7)利用组织培养技术对沂水百合快速繁殖的研究(论文提纲范文)
摘要 |
Abstract |
1 引言 |
1.1 百合 |
1.1.1 百合简介 |
1.1.2 百合的地理分布 |
1.1.3 百合的观赏价值 |
1.1.4 百合的食用和药用价值 |
1.1.5 百合的形态结构 |
1.1.6 百合的生态习性 |
1.1.7 沂水百合特征习性 |
1.2 植物组织培养 |
1.2.1 基本概念 |
1.2.2 植物组织培养研究历史 |
1.2.3 植物组织培养培养特点 |
1.2.4 植物组织培养在园林中的应用 |
1.2.5 植物组织培养在园艺中的应用 |
1.2.6 植物组织培养在种质资源保存中的中的应用 |
1.2.7 植物组织培养在育种中的中的应用 |
1.3 百合组织培养研究进展 |
1.4 研究目的与意义 |
2 材料与方法 |
2.1 试验材料 |
2.2 试验方法 |
2.2.1 培养条件 |
2.2.2 初代培养 |
2.2.3 继代培养 |
2.2.4 生根培养 |
2.3 数据统计与分析方法 |
3 结果与分析 |
3.1 初代培养 |
3.2 继代培养 |
3.2.1 细胞分裂素种类和浓度对沂水百合不定芽增殖的影响 |
3.2.2 生长素种类和浓度对百合不定芽增殖的影响 |
3.2.3 CPPU和NAA不同浓度组合对百合不定芽增殖的影响 |
3.3 生根培养 |
3.3.1 生长素种类对百合生根的影响 |
3.3.2 NAA不同浓度对百合生根的影响 |
3.3.3 基本培养基对沂水百合生根的影响 |
3.3.4 添加不同浓度的活性炭对百合生根的影响 |
4 讨论 |
4.1 初代培养 |
4.2 继代培养 |
4.2.1 细胞分裂素种类和浓度对沂水百合不定芽增殖的影响 |
4.2.2 生长素种类和浓度对沂水百合不定芽增殖的影响 |
4.2.3 CPPU和NAA不同浓度组合对沂水百合不定芽增殖的影响 |
4.3 生根培养 |
4.3.1 生长素种类对沂水百合生根的影响 |
4.3.2 NAA浓度对沂水百合生根的影响 |
4.3.3 不同培养基对沂水百合生根的影响 |
4.3.4 不同浓度的活性炭对沂水百合生根的影响 |
5 结论 |
5.1 初代培养 |
5.2 继代培养 |
5.3 生根培养 |
致谢 |
参考文献 |
附录 |
作者简介 |
(8)林木植物组织培养及存在问题的研究进展(论文提纲范文)
1 林木植株再生体系研究进展 |
1.1 外植体的选择及分化途径 |
1.1.1 腋芽萌发途径 |
1.1.2 间接器官发生途径 |
1.1.3 体细胞胚胎发生途径 |
1.2 影响增殖的主要因素 |
1.2.1 培养基 |
1.2.2 植物生长调节剂 |
1.3 影响生根的因素 |
2 组培存在的主要问题 |
2.1 褐化 |
2.1.1 外植体材料 |
2.1.2 培养基 |
2.1.3 培养条件 |
2.2 玻璃化 |
2.3 污染 |
2.4 成本高 |
2.5 配套设施不健全 |
3 组培新技术 |
4 展望 |
(9)药用植物组织培养中褐化现象的研究进展(论文提纲范文)
1 药用植物组织培养中的褐化现象 |
2 药用植物组织培养中外植体褐化类型及其机制 |
2.1 酶促褐化 |
2.2 非酶促褐化 |
3 药用植物褐化现象的影响因素 |
3.1 外植体本身的影响 |
3.1.1外植体龄、取材时间及取材部位 |
3.1.2外植体处理方式 |
3.2 外在因素对药用植物褐化的影响 |
3.2.1灭菌剂及作用时间 |
3.2.2培养基p H、种类及其状态 |
3.2.3培养条件 |
3.3添加外源物对药用植物组织培养褐化的影响 |
3.3.1植物激素 |
3.3.2抗褐化剂 |
4 控制药用植物组织培养褐化的有效措施 |
4.1 选择适宜的外植体和培养条件 |
4.2 调控组织培养基质 |
4.3 加入抗氧化物质 |
4.4 气体熏蒸 |
4.5 其他措施 |
5 结语与展望 |
(10)木本植物组织培养(论文提纲范文)
1 木本植物组织培养中再生方式 |
1.1 器官发生 |
1.2 体细胞胚诱导 |
1.3 体细胞胚再生 |
1.4 再生植株移栽 |
2 木本植物组织培养中的关键因素 |
2.1 基本培养基 |
2.2 植物激素 |
2.2.1 生长素 |
2.2.2 细胞分裂素 |
2.2.3 赤霉素 |
2.2.4 乙烯 |
2.2.5 脱落酸 |
2.3 碳源 |
2.4 pH值 |
3 影响木本植物组织培养的突出问题 |
3.1 外植体灭菌 |
3.2 外植体褐化 |
3.3 愈伤组织褐化 |
4 结语 |
四、植物组织培养的应用简介(论文参考文献)
- [1]樟子松外生菌根真菌多样性及菌根生物技术研究[D]. 张文泉. 内蒙古农业大学, 2013(10)
- [2]植物细胞全能性和再生[J]. 许智宏,张宪省,苏英华,胡玉欣,徐麟,王佳伟. 中国科学:生命科学, 2019(10)
- [3]樱花组培快繁与扦插繁殖研究[D]. 雷巾茗. 北京林业大学, 2020(02)
- [4]无患子组织培养再生体系研究[D]. 陈佳. 福建农林大学, 2014(11)
- [5]植物组织培养技术在中药资源中的应用[J]. 王娟,李金鑫,李建丽,高文远. 中国中药杂志, 2017(12)
- [6]黄芪毛状根培养体系的优化及其主要活性成分生物合成的诱导调控研究[D]. 焦骄. 东北林业大学, 2016(02)
- [7]利用组织培养技术对沂水百合快速繁殖的研究[D]. 郝梓博. 内蒙古农业大学, 2019(01)
- [8]林木植物组织培养及存在问题的研究进展[J]. 黄烈健,王鸿. 林业科学研究, 2016(03)
- [9]药用植物组织培养中褐化现象的研究进展[J]. 戴莹,杨世海,赵鸿峥,赵连华. 中草药, 2016(02)
- [10]木本植物组织培养[J]. 吉训志,秦晓威,胡丽松,王晓阳,李付鹏,郝朝运. 热带农业科学, 2019(04)